配置RPMI-1640培養(yǎng)基的注意事項(xiàng)你知道么?今天就讓我們一起來(lái)了解一下吧啊。
 

　　配置RPMI-1640培養(yǎng)基的注意事項(xiàng)如下：
 

　　1)配制培養(yǎng)基最好使用新制備的三蒸水。一般在試驗(yàn)前當(dāng)天或前一天制備為好。調(diào)節(jié)pH值的酸堿溶液也應(yīng)該使用這種水配制。
 

　　2)培養(yǎng)液配好后，應(yīng)先抽取少許放入培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)，于37℃溫箱內(nèi)置24～48hr，以檢測(cè)培養(yǎng)液是否有污染。
 

　　3)溶解培養(yǎng)基：將干粉培養(yǎng)基溶于總量1/3的水中，再用水洗包裝袋內(nèi)面兩次，倒入培養(yǎng)液中。振蕩或超聲助溶，一般不要加熱助溶。
 

　　4) 補(bǔ)加試劑：根據(jù)包裝袋說(shuō)明和試驗(yàn)需要加入NaHCO3(2.0g)、谷氨酰胺、丙酮酸鈉、HEPES等其他試劑。
 

　　5) 加抗生素：一般抗生素終濃度為――青霉素100U/ml，鏈霉素100U/ml。市售青霉素為80萬(wàn)U/瓶，可溶于4ml體積，每一升培養(yǎng)液中加0.5ml即可。市售鏈霉素為100萬(wàn)U/瓶，可溶于5ml體積，每一升培養(yǎng)液中也加0.5ml即可。無(wú)鏈霉素的情況下，用慶大霉素代替，終濃度調(diào)為50～200U/ml。
 

　　6) 調(diào)pH值：加水到900ml(在需要加10%小牛血清的情況下)，然后用5% NaHCO3調(diào)節(jié)pH到7.2。
 

　　7) 過(guò)濾除菌：宜采用0.45um和0.22um濾膜各一張，上層為0.45um，下層為0.22um，以保證過(guò)濾效果。注意濾膜正面(光面)朝上。過(guò)濾后分裝于小瓶中(100或200ml)。
 

　　8) 加小牛血清：根據(jù)培養(yǎng)基配制的量將小牛血清分裝，冷凍保存(-20℃)。臨用前將加入小牛血清(10%~20%)。
 

　　9)每次配液時(shí)，需要的其他輔助性液體(Hanks，胰蛋白酶消化液，PBS，抗生素溶液等)也可以同時(shí)配制，分別過(guò)濾。
 

　　10)市售小牛血清使用前都應(yīng)該滅活(56℃，30min)，以消除補(bǔ)體活性。動(dòng)物血清個(gè)體差異大，故而每一批血清都進(jìn)行嚴(yán)格檢測(cè)，同時(shí)進(jìn)行無(wú)菌試驗(yàn)。優(yōu)質(zhì)血清應(yīng)該為淡黃色，透明，無(wú)溶血，無(wú)沉淀，滅活后顏色稍深。生化檢測(cè)總蛋白含量3.5~4.5g/100ml，球蛋白不高于2g/100ml。選定一個(gè)效果較好的批號(hào)后，可一次多購(gòu)該批號(hào)的血清，保證試驗(yàn)條件的穩(wěn)定。
 

　　11)由于市售小牛血清pH未知，但大多偏酸。試驗(yàn)中加入小牛血清后，培養(yǎng)基的pH可能還會(huì)變化，故亦可先加入小牛血清后調(diào)pH值。但此種方法過(guò)濾較困難，只適于正壓過(guò)濾。
 

　　12)每次配液量以兩周左右為宜，一次配液不要太多，防止?fàn)I養(yǎng)成分(主要為谷氨酰胺)損失，造成實(shí)驗(yàn)繁瑣或者污染。
 

　　13)最后，制備培養(yǎng)基的器皿清洗要絕對(duì)干凈，烤干后備用(濾器、濾膜、量筒、移液管及盛放培養(yǎng)基的小瓶等存放和轉(zhuǎn)移培養(yǎng)基液體的器具都應(yīng)進(jìn)行滅菌)。